小鼠骨髓干细胞取样制备方法MouseSPprotocol1.水浴设置在37度，并用温度计量确认温度。预热DMEM+，预冷HBSS+2.使用5-8周龄雄性小鼠，取大腿骨和胫腓骨处的骨髓悬浮于HBSS+、1)杀死小鼠，背朝下躺着，用70%酒精喷洒腹部灭菌、2)臀部稍下方用齿状刀口的剪刀水平切开腹部皮肤、3)从此刀口同时向上向下同时撕裂皮肤，用钳子钳住膝盖骨扯下所有腿部皮肤、4)从膝盖处剪断，取下胫腓骨，尽可能将肌肉组织剔除干净，剪掉脚，将其放于陪替氏培养皿，其中放有5ml左右预冷的HBSS+，置于冰上、5)剔除干净大腿骨上的肌肉类组织，在臀部处剪掉大腿骨，骨髓细胞主要在这里，所以尽可能取得更多的大腿骨，骨上组织尽可能剔出的越干净越好，以免骨髓细胞粘附上面、将其置于培养皿、6)一个小鼠取得四段腿骨,用钳子固定垂直培养皿方向固定腿骨，用27-G10ml注射器打入HBSS+、骨髓细胞会从另一端推出，尽可能取得更多细胞，腿骨上下颠倒再推打,骨髓取出后腿骨会变白的、7)用18-G针头反复推吸4-5次培养皿里的细胞，以打散团块细胞、但尽量不要打入气体，因为气泡容易导致细胞死亡、将细胞转移到50ml的PP离心管里，同时用70um的滤网过滤去处碎骨或团块,计数有核细胞、3.精确计数有核细胞、（平均5x107有核细胞/6周龄的C57Bl/6小鼠）、4.5min500g4°C离心，弃上清，加溶血素裂解红细胞：注：当红细胞较多时细胞悬液：红细胞裂解液＝1：8室温静置10min当红细胞较少时细胞悬液：红细胞裂解液＝1：4室温静置5min红细胞裂解液为10×，临用前用DDW稀释成1×5.用HBSS+（2%FBS）洗细胞（5min500g4°C离心）6.用预热的DMEM(2%FBS)调整细胞浓度为106/ml7.分两管，其中一管加入verapamil，verapamil的终浓度为100μM，封口膜封好37度水浴10min后，和另一管同时加入Hoechst33342染色，终浓度5ug/ml，37度水浴90min，染色期间每15min混匀一次、8.5min500g4°C离心，用含2ug/mlPI的HBSS+重悬细胞9.上机检测