正交设计川木通【摘要】目的确定川木通RAPD-PCR反应各因素的最佳水平，最终确定RAPD-PCR反应的最佳反应条件。方法采用正交设计L16在4个水平上对川木通类植物进行RAPD-PCR进行试验。两次结果分别用统计软件MINITAB进行分析。结果最终确定RAPD-PCR反应的最佳反应条件为：20μl体系，其中含1×CRbuffer,/LMgCl2,/LdNTPs,酶，μmol/L10-mer引物，50ng模板DNA，最终确定退火温度36℃。同时发现Taq酶对反应体系影响最大。结论建立了可靠的反应体系，为该类药材的分子鉴定奠定了基础。【关键词】正交设计；川木通；RAPD-PCR川木通类药材均来自于毛茛科铁线链属植物，该属植物我国共分布有108个种［1］，有些铁线莲属药用植物外形极为相似，有时非花期植株难以鉴别，经过药材加工后更加难以辨别，容易在应用中造成品种混乱，影响临床用药安全与疗效。因此，在具体开发使用本属药用植物资源时，应重视和加强对其品种的鉴定，以确保资源的正确合理使用。RAPD继承了PCR技术效率高，样品用量少，灵敏度高，检测容易等优点［2］，目前被广泛地应用于药用植物的分类鉴定工作。但PCR各因素水平对反应结果均有影响。目前关于川木通RAPD-PCR的反应体系优化未见报道，本实验采用正交设计L16在4个水平上对川木通类植物进行RAPD-PCR进行试验，建立了较为可靠的反应体系。本工作为以后该类植物与药材的分子鉴定奠定了基础。1材料本实验所使用的川木通原植物均为作者在四川各地实地采集，植物叶片采集后采用硅胶直接干燥，另外部分采集后直接编号用液氮保存，此后保存在-80℃冰箱备用，所采集植物均经过万德光教授鉴定后备用。Taq聚合酶、dNTP、T4连接酶、琼脂糖购自TaKaRa宝生物工程有限公司；RAPD引物购自北京赛百盛公司。2方法植物总DNA的小规模提取与DNA浓度的测定提取方法按干滟等［3］的方法并稍加改进。测定浓度后稀释至50ng/μl。反应因素水平的确定与正交表的设计［4］为了确定PCR反应中的5个因素的最佳水平，采用正交设计L16在4个水平上进行实验。参加PCR反应的因素水平见表1，L16设计方案见表2。表1PCR反应的因素水平μl水平表2PCR反应的因素水平L16正交实验设计μl将表2的16个处理重复两次，在PCR仪上进行扩增，结果电泳检测，记录。用统计软件MINITAB进行分析，得到川木通RAPD-PCR反应各因素的最佳水平，最后在PCR仪上，用此最佳因素水平的PCR反应体系进行梯度退火试验，筛选得到最佳退火温度。扩增在正交结果的基础上，建立了本实验所使用的体系［5，6］。RAPD扩增反应所采用的条件和体系如下：20μl体系，其中含1×PCRbuffer，/LMgCl2，/LdNTPs，酶，μmol/L10-mer引物，50ng模板DNA，补ddH2O至终体积20μl。PCR反应热循环程序如下：95℃预变性5min；36℃复性1min；72℃延伸；94℃变性1min；36℃复性1min；72℃延伸，35个循环。最后72℃延伸10min，反应产物在4℃保存。电泳分析与结果统计DNA扩增产物在1×TAE的缓冲条件下，于%琼脂糖凝胶分离，溴化乙锭染色。标准分子量为Tokara提供的DL2000Marker。使用凝胶成像系统拍照分析。3结果电泳结果评分按照表2设计的16个处理进行PCR反应后，产物进行电泳。结果见图1。根据电泳结果，按照本实验目的，即以后将要进行的遗传多样性分析的要求将16个处理从高到低依次打分，条带数量越丰富、清晰度越高、背景低的最佳产物记为16分，与此相反，最差的记为1分［7,8］。两次重复分别独立设计，从两次重复的结果看，各个处理组合的反应都具有较高的一致性。两次记分分别为1，13，14，11，10，16，15，12，2，9，8，7，6，5，4，3和1，12，14，13，10，16，11，15，2，8，9，7，5，6，4，3。各因素对PCR反应影响的差异分析将上述处理结果用统计软件MINITAB进行方差分析。结果见表3。由F值可见，Taq酶的影响最大，模板的影响最小，各因素对PCR反应的影响由大到小依次为：Taq酶、引物、Mg2+、dNTP、模板。由于各因素水平间的差异均达到显著水平，可以进一步进行因素内多重分析。表3PCR反应各因素间方差分析因素内各水平对PCR结果的影响为了分析各因素的最佳反应水平，在方差分析的基础上，继续对每个因素各个水平作多重比较，评价结果如下。Taq酶的与，与水平差异不显著，其余组合差异显著。由于Taq酶对结果影响最大，与水平达到了反应的最佳效果，且水平间差异不明显，从经济角度考虑选择了水平为最佳反应水平。Mg2+浓度对PCR结果影响明显，较为敏感，水平表现最好，选择