多糖提取的相关操作.doc
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DEAE柱:准备柱子:洗柱:洗涤剂、自来水、去离子水,洗至不挂水珠、水不成股下流。浸泡滤膜:95%酒精,浸泡柱上下滤膜(包括胶圈)至少30min,时间可延长(5h左右),主要作用是脱去脂溶性杂质。每次柱使用完毕后都要做此步骤。洗布氏漏斗:用10%HCL抽滤,后用蒸馏水洗涤,去除滤膜板中可能灰尘。装柱:铁夹夹紧对齐,装完柱后要检查是否漏水。准备填料:(再生步骤)DM过酸过碱:0.2M/LHCL和NaOH浸泡填料,先碱后酸,从加入碱时开始计时,一般为30min,加入时用玻棒搅动,以防与碱作用不充分。但若是新填料,浸泡20min后即可使用。碱对填料有影响,忌浸泡时间超过30min,一般20min即可。入碱后,用去离子水(﹥2L,充分去除OH根离子)在布氏漏斗上过滤。脱水完全(洗2-3遍至中性)。后浸泡酸。重生方法同上。脱气:先溶解DM,再倒入抽滤瓶,真空抽滤,至无白沫,可时而摇晃,抽至无白沫无气泡。重要,最好能延长脱气时间。上柱:倾倒填料时浓度尽量稀,使填料贴壁下流。静止。待填料沉降,吸出上清液,统一收集,反复此操作,尽可能回收填料。(尽量不起气泡)沉降一段时间后,待上清未完全沉降时倒入尚未倒完的胶,防止多次倾倒引起的分层现象。此时,用夹子夹住软管,使其不漏液,待沉降完全,出现清水层,去除夹子,滴液。平衡:若上柱平衡后暂时不上样,可隔一天平衡一次,防止长菌。滴数:三秒1滴,20分钟收集一管约10ml,33小时过柱一体积。水层不能滴干,防止胶出现干裂现象。检验:用1MAgNO3检验过柱水中Cl离子是否洗净,至无Cl离子后再过一柱体积。皆用去离子水。上样:上样前样品水溶,离心,先取上清,收集保留不溶物。粗柱子:DEAE量占柱体积80%高度(标记高度,要有足够的塔板数),上8克样。上样步骤:先将螺旋拧开,用夹子夹紧软管,放在液面以上,使其液面不下降。取出上层流动相,使液面与填料面相切,用移液管加样,加样使尽量靠近填料,贴着柱子壁转一圈,均匀加样。加完后用流动相洗一下残留在壁上的样品。松开夹子,使其滴液,待样品吸附上填料后,夹紧夹子,放在液面以上,在柱子内加入一段流动相,拧上螺旋,开始走样。流速:六秒一滴。流动相:视多糖的实际情况而定。硫酸苯酚法测多糖:先确定样品出现的管数,确定头和尾后,三管一测。方法:100微升样品,400微升5%苯酚(枪头),2ml浓硫酸(移液管)。振荡后静置1小时。490nm处测量。试剂的配置:苯酚沸水浴溶解,制备5%溶液500ml备用。收集:旋蒸:收集到一定量后,进行旋蒸,浓缩至10ml内。透析:透析袋的准备:剪20cm左右透析袋,烧杯中沸煮5分钟后用蒸馏水60℃冲洗2分钟,4℃待用。使用后用蒸馏水或者加0.05%-0.1%的叠氮钠的蒸馏水保存,每次使用之前都用水清洗、沸煮。(非即用型)透析袋的选择:一般根据所得的糖的分子大小来选择透析袋,在未知的情况下使用孔径最小的透析袋(截留分子量3000)。透析:加样至透析袋的2/3,两头用夹子夹住,纯水透析,一小时换一次水,4至5次。过夜。11、再次浓缩至高度少于1cm,冻干。二、G100柱:1、G100的准备:(1)先确定装柱的体积,再确定装柱的质量,具体换算公式为:1克凝胶吸水10ml*10倍即100(G100型号判定)。(2)将胶泡在将胶泡在超纯水,3天,多放点水,要换水去杂质。(新胶)(3)脱气。2、装柱:(1)将胶混匀装柱,不可起泡,倒入装柱,玻棒引流。最好是边轻轻搅动边倒胶。(2)沉降,接恒流泵,平衡流速极慢。平衡至胶的高度不变。3、流速:上样后流速50分钟6ml。4、流动相:万分之一的NaN3,其他视实验要求而定。5、当柱子压力变大,流速自动变慢后,可倒流冲洗,流速可快一点。6、上样:110mg左右,溶至1ml,震荡漩涡器充分溶解,上样之前过滤。上样时,取出胶面上层的清夜,将样品贴在柱子内侧成圈状加样,越靠近胶面越好,残留在柱子上的样品越少越好。少量流动相清洗柱子壁。待样品都吸附在胶上,加上上清流动相,开始走样。7、检测方法:50ul样+1ml5%苯酚(配制苯酚时,所有容器预热)+2ml浓硫酸,室温后测量。490nm。收集到一定量后,浓缩至10ml以内。8、透析:加样至透析袋的2/3,纯水透析,一小时换一次水,4至5次。过夜。用最小截留分子量的透析袋。透析袋分即用型和非即用型,即用型用蒸馏水冲洗后直接使用,无需前处理。非即用根据说明书进行前处理,比较常见的处理方法为:用沸水煮五至十分钟,再用蒸馏水洗净。使用时,一端用透析夹夹紧,由另一端灌满水,用手指稍加压,检查不漏,方可装入待透析液,通常要留三分之一至一半的空间,以防透析过程中,透析的小分子量较大时,袋外的水和