实验四 RNA的提取及其纯度检测.doc
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实验四RNA的提取及其纯度检测实验目的:了解Trizol提取总RNA的原理,掌握高质量完整总RNA提取的技术以及电泳变性胶电泳检测和浓度及纯度鉴定方法。实验原理Trizol是一种酚与异硫氰胍的混合物,非常容易把组织和细胞中的总RNA提取出来。在加入氯仿离心后,RNA保留在水相中,与DNA和蛋白质分离开来(保留在有机相中)。吸取水相,加入异丙醇成淀RNA,从而得到完整纯度高的总RNA。实验内容材料小鼠新鲜肝试剂总RNA提取纯化试剂:Trizol(Invitrogen);DEPC(Amersham),无水乙醇,已丙醇;电泳试剂:TAE,上样缓冲液(50%甘油,10mMEDTA,0.25%溴酚蓝,0.25%二甲苯青),琼脂糖。操作步骤总RNA的提取1小鼠肝组织的匀浆裂解断颈处死小鼠,立即解剖取出肝脏,取50-100mg到玻璃匀浆器中,假如1mlTrizol反复匀浆膜碎组织,使细胞完全裂解。按1mlTrizol加入0.2ml氯仿,震荡15秒,室温放置3分钟,12000×g,4℃离心15分钟。2RNA的沉淀将离心的上清转移到新的离心管中,按1mlTrizol加入0.5ml异丙醇,震荡15秒,室温放置10分钟,12000×g,4℃离心10分钟。3RNA的洗涤与溶解吸掉上清,加入1ml75%乙醇洗涤沉淀,4℃,7500×g离心5分钟。吸掉上清,空气干燥RNA沉淀10分钟,加入适量的DEPC处理水(50μl)溶解RNA,立即电泳和紫外浓度和纯度鉴定,剩余-70℃保存备用。结果在凝胶上可以看到一般可以看到三条带,其中从上样孔开始对应的带的分别是28S,18S和5S,其中18S和28S的条带明显清晰,而5S的带比较弱,28S的带的亮度是18S带亮度的2背左右,说明RNA保持完整。紫外分光光度法测定RNA的浓度和纯度总RNA用10mM的Tris-HCl(pH8.0)稀释,利用紫外分光光度计测定A260和A280值,根据1OD=40ug定量,并计算A260/A280比值,每一样品重复3次。如果A260/A280比值均在2.0以上(2.0-2.2之间),说明RNA的纯度很好。注意事项创造无Rnase的环境注意以下几点,以防止Rnase污染样品,保证分离到全长mRNA:1、手和空气中的细菌霉菌是主要的Rnase污染源。为防止污染,应在超净台上无菌操作。这些试剂都要反复使用,所以开启和关闭试剂瓶一定防止污染。一直带塑料手套。2、最好用一次性使用塑料制品提RNA,这些制品常是无RNase的,无须灭活RNase。3、不是一次性使用的玻璃和塑料制品,用前应除RNase。玻璃制品应于200℃烘烤过夜,塑料制品用前用0.1NNaOH,1mMEDTA作彻底冲洗,再用无RNase水冲洗。4、用户自备的溶液应用0.05%DEPC处理过夜,再高压灭菌30分钟以出去痕量DEPC。实验五逆转录PCR(RT-PCR)扩增基因特异片段实验目的了解RT-PCR的原理,掌握RT-PCR扩增基因的特异片段的技术。实验原理PCR(PolymeraseChainReaction;聚合酶链式反应)是一种体外扩增DNA的简单而有效的方法。虽然原理上PCR法是扩增DNA,RNA不能直接被扩增,但是经过反转录酶的作用把RNA反转录成cDNA后,PCR法便可应用于RNA的解析了。迄今为止,此方法已广泛应用于RNA的构造解析、cDNA的克隆及RNA水平上的表达解析等多种领域。编码蛋白质的基因在转录后形成mRNA,mRNA翻译后编码产生蛋白质。真核生物的mRNA的3端有多个腺苷酸,形成寡聚腺苷酸的尾巴,因此可以与OligodT结合,在反转录的作用下形成cDNA。再通过基因的特异引物PCR扩增得到基因的特异片段,此方法称为2步法。也可以根据已知基因的序列设计引物,以基因的特异引物进行逆转录,得到特异基因的cDNA,以此为摸板PCR扩增得到特异基因片段,由于此法转录和PCR扩增在同一反应管中进行,转录和扩增的引物相同,因此称为一步法。OneStepRT-PCR的原理一步法的优点:实验内容材料小鼠新鲜肝试剂总RNA提取纯化试剂:Trizol(Invitrogen);DEPC(Amersham)无水乙醇,已丙醇;RT-PCR试剂盒逆ReverTraAce-α-购自日本东洋纺公司本试剂盒采用了两步反应法(TwoStep法)完成RT-PCR反应。RNA→cDNA→PCR反应操作在不同反应体系中进行,先由反转录酶从RNA反转录为cDNA,再由cDNA扩增目的片段。操作步骤1总RNA的提取根据上次实验总RNA的提取进行。2按下列组成配制RT-PCR反应液。①在0.2ml离心管中加入RNaseFreeH2O5.5