会计学真核生物的转录因子是由两个(liǎnɡɡè)可以分开的、功能上相互独立的结构域(domain)组成的。GAL4分子的BD可以同上游激活序列(xùliè)(upstreamactivatingsequence,UAS)结合。//His,β-gal一般情况下，单独的BD可以与GAL4上游活化序列（GALUAS）结合，但不能引起转录。然而，将一段具有转录激活活性的转录因子基因构建(ɡòujiàn)到BD载体上，若其表达产生的BD单独与UAS结合也可以引起下游报告基因的转录，那么就称之为酵母双杂中的自激活现象。反过来，可以利用这种自激活现象来验证某个转录因子是否具有转录激活活性。His,β-galYPDA正对照(duìzhào)：pGAL4负对照(duìzhào)：pBD-GAL4将-70℃下冻存的酵母菌在YPAD平板(píngbǎn)上划线，倒置于30℃培养2-3天。挑取2-4个大菌落（直径2-3mm）于1.5mlYPAD液体培养基中，剧烈震荡5min，打散菌落，接种于50mlYPAD液体培养基中（250ml三角瓶），230-250转/min，30℃培养18-24hr。取菌液测定其OD600值，需达到1.5。若不到，再培养1~2hr，若还不到，换单克隆重摇。取50ml菌液于300mlYPAD培养基中（1-2L大三角瓶），30℃，230rpm，摇培3hr，至OD600值为0.4~0.6。4000rpm5min于常温收集菌体，重复一次。室温下1000g离心5min，去上清，加入50ml超纯水清洗悬浮3次。1000g离心5min，弃上清，用新配的1.5ml1×TE/LiAc重悬细胞，置冰上，即成为酵母感受态细胞。（只能现做现用，不能贮存，室温只能放置1-2hr）。酵母转化鲑鱼精DNA（20μg/μl）沸水中煮20min，冰上冷却10min。加入100μl酵母感受态细胞、1~2μl构建质粒（约200ng）、100μg鲑鱼精、600μlTE-LiAc-PEG，变速涡旋10s~1min至混匀。30℃，200rpm/min，恒温摇床振荡30min。加入70μlDMSO，温和(wēnhé)颠倒混匀。42℃水浴热休克15min，后冰浴10min。常温下，3000rpm离心10s；弃上清（去干净），用0.5ml1×TE重悬细胞。（1×TE室温只能放置1~2hr）将转化后的酵母培养于SD/-Trp培养基上，30℃倒置培养约3-5天，直至出现菌落。阳性克隆的筛选：将在SD/-Trp培养基上长出的酵母菌落转移到SD/-His培养基上进行筛选。30℃培养2天，检查生长(shēngzhǎng)情况。对生长(shēngzhǎng)状态较好的单克隆进行β-半乳糖苷酶活性分析。β-半乳糖苷酶活性分析（酵母克隆滤纸显色分析）取2ml的Z缓冲液/X-gal溶液润透2张滤纸；小心取一张滤纸覆盖于生长有转化子的平皿上，用涂布棒小心赶出气泡(qìpào)，使滤纸尽可能与酵母菌接触（1min）；用一根针在滤纸上刺个小孔以标记菌落位置，用镊子轻轻取出滤纸，沾有菌的面朝上置液氮中10s，夹出滤纸，室温解冻；重复3次；沾有菌的面朝上，紧贴于预先用Z缓冲液/X-gal溶液润透过的那张滤纸上，同时吸掉多余的Z缓冲液/X-gal溶液；沾有菌的面朝上，纸间不要有气泡(qìpào)，放置于30℃温箱3-8h，观察酵母的颜色变化。/