植物组织培养试验.ppt
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实验一培养基贮备液(母液)的配制一,MS培养基的组成2、微量成分→贮备液IImg/LKI0.83H3BO36.2MnSO44H2O22.3ZnSO47H2O8.6Na2MoO42H2O0.25CuSO45H2O0.025CoCl26H2O0.0253、铁→贮备液IIImg/LFeSO47H2O27.8Na2EDTA2H2O37.34、有机成分→贮备液IVmg/L肌醇100烟酸0.5盐酸硫胺素(VB1)0.1盐酸吡哆醇0.5甘氨酸2二,常用生长调节剂三、作业:贮备液I(g)实验二固体培养基的配制与灭菌称量:按每瓶培养基终体积50mL计,称取适量的琼脂(常用量8g/L)和蔗糖(常用量30g/L),置于大烧杯中,加蒸馏水至需配培养基终体积的3/4左右,(加热)使之溶解。混合:分别加入一定量的贮备液I、II、III、IV和生长调节物质及其它特殊补加物,再加蒸馏水直至需配培养基的终体积。调pH值:充分混合后,在60℃水浴条件下用0.1mol/L的NaOH和0.1mol/L的HCl调节培养基的pH值至5.8。灭菌:封严培养容器口后,120℃灭菌20min后,将培养基取出,置于水平台子上,在室温下冷却,备用。实验三外植体材料的预处理、消毒及接种二、方法步骤:(二)用洗衣粉水(1~2角匙洗衣粉/100ml水)等浸洗上述植物材料约5min,再用自来水冲净洗衣粉水。这是进一步减少污染的处理。同时配制消毒液:50%次氯酸钠溶液。(四)操作人员洗手擦干,换上洁净工作服,戴上帽子以免头发散落以及带来污染。坐到超净台前,并将装有经湿热灭菌培养基的培养瓶、配好的消毒液、洗净沥干的植物材料置于超净工作台上,用70%酒精棉球擦手与器具外壁,即可对经上述预处理的植物材料进行表面灭菌处理,自此以后各步均须在超净工作台上操作。(五)具体首先将经上述预处理、沥干水的植物材料放入广口瓶或烧杯,向其中倒入新鲜配制、浓度一定并且加有一定量(通常为灭菌剂消毒液的0.5%,或每100mL消毒液滴加10~15滴)Tween-80(土温-80)等表面活性剂的消毒液适量(液面高度超出植物材料至少0.5cm),开始计算灭菌时间。也可在使用上述灭菌剂之前,先将植物材料浸于70%乙醇灭菌10~30秒。(六)在持续灭菌时间内定时用玻璃棒轻轻搅动,以促进植物材料各部分与消毒液充分接触,驱除气泡,使灭菌彻底。在灭菌时间结束前1min时,即可开始用玻璃棒等轻轻压住植物材料将消毒液慢慢倒入废物缸,注意勿使植物材料滑出。接着立即倒入适量无菌水,轻搅植物材料以清洗去除灭菌剂残留。一般表面灭菌时间的计算是从倒入消毒液开始,到倒入无菌水为止。无菌水的清洗时间每次约3min;清洗5次。(七)倒出、沥去最后一次清洗用水,开始进行植物材料的切割及接种。逐一取出经上述灭菌处理的植物材料,置于下面垫有经灭菌处理的培养皿(或小白瓷碟)的无菌纱布或滤纸上,左手拿小镊子,右手拿解剖刀,切除各切段或切块上被灭菌剂毒坏的部分。如有必要,也可再行切分。在完成切割后,将解剖刀和小镊子在95%乙醇中浸蘸一下,在酒精灯焰上灼烧灭菌之后放回原处,以便待冷却后下一切割再用。(八)接着,左手拿培养瓶,将培养容器口外壁在靠近酒精灯外焰处转燎数秒,以将其可能带有的微生物等固定于原处;在酒精灯焰附近处,用右手拇指与食指配合将瓶塞打开,并将其夹于左手无名指与最小指之间;再将培养瓶口在酒精灯焰上轻转灼烧灭菌;以右手拇指与食指配合,用大镊子夹紧一外植体准确送入培养容器,并将其轻轻地半插入固体培养基;将大镊子在95%乙醇中浸蘸一下,在酒精灯焰上灼烧灭菌之后放回原处,以便待冷却后下一操作再用;将培养瓶口及瓶塞分别在酒精灯焰上小心地轻转灼燎数秒;盖好瓶塞,旋紧,将其置于超净工作台的适当位置。(九)在完成了该第一只培养容器的外植体接种操作后,用70%乙醇对超净工作台的台面进行擦拭灭菌,接着再进行第二只培养容器的外植体接种及超净台台面的灭菌,直至全部完成。三、作业:实验四枝芽增殖培养基的设计与配制二、方法步骤:三、作业:实验五枝芽增殖培养的外植体的处理与接种二、方法步骤:三、作业:实验六根再生诱导培养基的设计与配制二、方法步骤:三、作业: